ОБНБиоорганическая химия Russian Journal of Bioorganic Chemistry

  • ISSN (Print) 0132-3423
  • ISSN (Online) 1998-2860

ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ ПОКРЫТИЙ НА ИММОБИЛИЗАЦИЮ БИОМОЛЕКУЛ В ЯЧЕЙКАХ ИЗ ЩЕТОЧНЫХ ПОЛИМЕРОВ

Код статьи
S19982860S0132342325030062-1
DOI
10.7868/S1998286025030062
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 51 / Номер выпуска 3
Страницы
432-443
Аннотация
Биочипы с белковыми и олигонуклеотидными зондами используются для анализа образцов белков и нуклеиновых кислот. Ключевые задачи технологии - подбор материалов для подложек и функционализация поверхности. В данной работе проводили модификацию подложек из полибутилентерефталата, покрывая их фотоактивными полимерами: поли(этилен-со-пропилен-со-5-метилен-2-норборненом), ацетилцеллюлозой, поливинилацетатом и поливинилбутиралем. Покрытия наносили методом центрифугирования и высушивали. Исследовали влияние покрытия на характеристики биочипов. Методом фотоинициируемой радикальной полимеризации получали матрицу гидрофильных ячеек из щеточных полимеров с эпоксидными группами для иммобилизации ДНК-зондов и иммуноглобулинов человека. Функциональность зондов исследовали гибридизационным анализом и реакцией со специфичными антителами. Оценивали эффективность связывания зондов с молекулярными мишенями на биочипах с различными покрытиями. Ячейки на подложках с покрытиями поливинилбутиралем и поли(этилен-со-пропилен-со-5-метилен-2-норборненом) продемонстрировали лучшую эффективность связывания и слабую адсорбцию мишеней, обеспечивая высокую контрастность флуоресцентного изображения после связывания зондов. Биочипы на таких подложках перспективны для технологии микроанализа "лаборатория на чипе".
Ключевые слова
полимерные поверхности биочипы щеточные полимеры иммобилизация олигонуклеотидных зондов иммобилизация белков гибридизационный анализ флуоресцентный иммуноанализ
Дата публикации
07.12.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
6

Библиография

  1. 1. Stumpf A., Brandstetter T., Hübner J., Rühe J. // PLoS One. 2019. V. 14. P. e0225525. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0225525
  2. 2. Gryadunov D., Dementieva E., Mikhailovich V., Nasedkina T., Rubina A., Savvateeva E., Fesenko E., Chudinov A., Zimenkov D., Kolchinsky A., Zasedatelev A. // Exp. Rev. Mol. Diagn. 2011. V. 11. P. 839- 853. https://doi.org/10.1586/erm.11.73
  3. 3. Mateo C., Fernández-Lorente G., Abian O., Fernández-Lafuente R., Guisán J.M. // Biomacromolecules. 2000. V. 1. P. 739-745. https://doi.org/10.1021/bm000071q
  4. 4. Chi Q., Zhang J., Andersen J.E., Ulstrup J. // J. Phys. Chem. B. 2001. V. 105. P. 4669-4679. https://doi.org/10.1021/jp0105589
  5. 5. Sullivan T.P., Huck W.T. // Eur. J. Org. Chem. 2002. V. 2003. P. 17-29. https://doi.org/10.1002/1099-0690 (200301)2003:1%3C17::AID-EJOC17%3E3.0.CO;2-H
  6. 6. Zhi Z.L., Powell A.K., Turnbull J.E. // Anal. Chem. 2006. V. 78. P. 4786-4793. https://doi.org/10.1021/ac060084f
  7. 7. Yi S.S., Noh J.M., Lee Y.S. // J. Mol. Catal. B Enzym. V. 57. P. 123-129. https://doi.org/10.1016/j.molcatb.2008.08.002
  8. 8. Singh V., Ahmad S. // Cellulose. 2012. V. 19. P. 1759-1769. https://doi.org/10.1007/s10570-012-9749-6
  9. 9. Akkoyun A., Bilitewski U. // Biosens. Bioelectron. 2002. V. 17. P. 655-664. https://doi.org/10.1016/s0956-5663 (02)00029-5
  10. 10. Guerrero C., Vera C., Serna N., Illanes A. // Bioresour. Technol. 2017. V. 232. P. 53-63. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2017.02.003
  11. 11. Kobayashi H., Ikada Y. // Biomaterials. 1991. V. 12. P. 747-751. https://doi.org/10.1016/0142-9612 (91)90024-5
  12. 12. Isobe N., Lee D.S., Kwon Y.J., Kimura S., Kuga S., Wada M., Kim U.J. // Cellulose. 2011. V. 18. P. 1251- 1256. https://doi.org/10.1007/s10570-011-9561-8
  13. 13. Mueller M., Bandl C., Kern W. // Polymers. 2022. V. 14. P. 608. https://doi.org/10.3390/polym14030608
  14. 14. Zhao B., Brittain W.J. // Progr. Polym. Sci. 2000. V. 25. P. 677-710. https://doi.org/10.1016/S0079-6700 (00)00012-5
  15. 15. Miftakhov R.A., Ikonnikova A.Yu., Vasiliskov V.A., Lapa S.A., Levashova A.I., Kuznetsova V.E., Shershov V.E., Zasedatelev A.S., Nasedkina T.V., Chudinov A.V. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2023. V. 49. P. 1143-1150. https://doi.org/10.1134/S1068162023050217
  16. 16. Shaskolskiy B., Kandinov I., Kravtsov D., Vinokurova A., Gorshkova S., Filippova M., Kubanov A., Solomka V., Deryabin D., Dementieva E., Gryadunov D. // Polymers. 2021. V. 13. P. 3889. https://doi.org/10.3390/polym13223889
  17. 17. Shtylev G.F., Shishkin I.Yu., Shershov V.E., Kuznetsova V.E., Kachulyak D.A., Butvilovskaya V.I., Levashova A.I., Vasiliskov V.A., Zasedateleva O.A., Chudinov A.V. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2024. V. 50. P. 2036-2049. https://doi.org/10.1134/S106816202405033
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека