- Код статьи
- S19982860S0132342325050222-1
- DOI
- 10.7868/S1998286025050222
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 51 / Номер выпуска 5
- Страницы
- 979-987
- Аннотация
- Получены обычные и мультифункциональные катионные липосомы, эффективно доставляющие плазмидную ДНК (пДНК). Показано частичное ингибирование рецептор-опосредованного эндоцитоза комплексов пДНК с мультифункциональными катионными липосомами, содержащими фолатные липиды, в присутствии свободной фолиевой кислоты в клеточной среде. Дополнительное формирование комплексов пДНК с пептидом сигнала ядерной локализации (NLS) позволило увеличить эффективность экспрессии улучшенного зеленого флуоресцентного белка (EGFP) в 1.5–2 раза с использованием обычных и мультифункциональных катионных липосом. Добавление пептида NLS к пДНК и дальнейшее формирование комплексов с катионными липосомами может быть использовано для решения проблемы эффективной доставки пДНК в эукариотические клетки.
- Ключевые слова
- мультифункциональные катионные липосомы ПЭГ-липид фолатный липид пептид NLS пДНК фолиевая кислота
- Дата публикации
- 01.05.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 3
Библиография
- 1. Scalzo S., Santos A.K., Ferreira H.A.S., Costa P.A., Prazeres P.H.D.M., da Silva N.J.A., Guimarães L.C., E Silva M.M., Rodrigues Alves M.T.R., Viana C.T.R., Jesus I.C.G., Rodrigues A.P., Birbrair A., Lobo A.O., Frezard F., Mitchell M.J., Guatimosim S., Guimaraes P.P.G. // Int. J. Nanomedicine. 2022. V. 17. P. 2865–2881. https://doi.org/10.2147/IJN.S366962
- 2. Prazeres P.H.D.M., Ferreira H., Costa P.A.C., da Silva W., Alves M.T., Padilla M., Thatte A., Santos A.K., Lobo A.O., Sabino A., Del Puerto H.L., Mitchell M.J., Guimaraes P.P.G. // Int. J. Nanomedicine. 2023. V. 18. P. 5891–5904. https://doi.org/10.2147/IJN.S424723
- 3. Lu B., Lim J.M., Yu B., Song S., Neeli P., Sobhani N.K.P., Bonam S.R., Kurapati R., Zheng J., Chai D. // Front. Immunol. 2024. V. 15. P. 1–24. https://doi.org/10.3389/fimmu.2024.1332939
- 4. Baghban R., Ghasemian A., Mahmoodi S. // Arch. Microbiol. 2023. V. 205. P. 1–15. https://doi.org/10.1007/s00203-023-03480-5
- 5. Lim M., Badruddoza A.Z.M., Firdous J., Azad M., Mannan A., Al-Hilal T.A., Cho C.S., Islam M.A. // Pharmaceutics. 2020. V. 12. P. 1–29. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics12010030
- 6. Durymanov M., Reineke J. // Front. Pharmacol. 2018. V. 9. P. 1–15. https://doi.org/10.3389/fphar.2018.00971
- 7. Amoako K., Mokhammad A., Malik A., Yesudasan S., Wheba A., Olagunju O., Gu S.X., Yarovinsky T., Faustino E.V.S., Nguyen J., Hwa J. // Front. Med. Technol. 2025. V. 7. P. 1591119. https://doi.org/10.3389/fmedt.2025.1591119.
- 8. Xu E., Saltzman W.M., Piotrowski-Daspit A.S. // J. Control. Release. 2021. V. 335. P. 465–480. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2021.05.038
- 9. Cheng X., Lee R.J. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2016. V. 99. P. 129–137. https://doi.org/10.1016/j.addr.2016.01.022
- 10. Kabilova T.O., Shmendel E.V., Gladkikh D.V., Chernolovskaya E.L., Markov O.V., Morozova N.G., Maslov M.A., Zenkova M.A. // Eur. J. Pharm. Biopharm. 2018. V. 123. P. 59–70. https://doi.org/10.1016/j.ejpb.2017.11.010
- 11. Dilliard S.A., Siegwart D.J. // Nat. Rev. Mater. 2023. V. 8. P. 282–300. https://doi.org/10.1038/s41578-022-00529-7
- 12. Lin D.H., Hoelz A. // Annu. Rev. Biochem. 2019. V. 88. P. 725–783. https://doi.org/10.1146/annurev-biochem-062917-011901
- 13. Губанова Н.В., Морозова К.Н., Киселева Е.В. // Цитология. 2006. V. 11. P. 887–899.
- 14. Roy S.M., Garg V., Sivaraman S.P., Barman S., Ghosh C., Bag P., Mohanasundaram P., Maji P.S., Basu A., Dirisala A., Ghosh S.K., Maitymit R. // J. Drug Deliv. Sci. Technol. 2023. V. 83. P. 104408. https://doi.org/10.1016/j.jddst.2023.104408
- 15. Yao J., Fan Y., Li Y., Huang L. // J. Drug Target. 2013. V. 21. P. 926–939. https://doi.org/10.3109/1061186X.2013.830310
- 16. Fontes M.R.M., Teh T., Kobe B. // J. Mol. Biol. 2000. V. 297. P. 1183–1194. https://doi.org/10.1006/jmbi.2000.3642
- 17. Mashal M., Attia N., Maldonado I., Enríquez Rodríguez L., Gallego I., Puras G., Pedraz J.L. // Eur. J. Pharm. Biopharm. 2024. V. 201. P. 114385. https://doi.org/10.1016/j.ejpb.2024.114385
- 18. Kurihara D., Akita H., Kudo A., Masuda T., Futaki S., Harashima H. // Biol. Pharm. Bull. 2009. V. 32. P. 1303–1306. https://doi.org/10.1248/bpb.32.1303
- 19. Nematollahi M.H., Torkzadeh-Mahanai M., Pardakhty A., EbrahimiMeimand H.A., Asadikaram G. // Artif. Cells Nanomed. Biotechnol. 2018. V. 46. P. 1781–1791. https://doi.org/10.1080/21691401.2017.1392316
- 20. Bishani A., Makarova D.M., Shmendel E.V., Maslov M.A., Sen’kova A.V., Savin I.A., Gladkikh D.V., Zenkova M.A., Chernolovskaya E.L. // Pharmaceutics. 2023. V. 15. P. 92184. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics15092184
- 21. Shmendel E.V., Bakhareva S.A., Makarova D.M., Chernikov I.V., Morozova N.G., Chernolovskaya E.L., Zenkova M.A., Maslov M.A. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2020. V. 46. P. 1250–1260. https://doi.org/10.1134/S106816202006031X
- 22. Mornet E., Carmoy N., Lainé C., Lemiègre L., Le Gall T., Laurent I., Marianowski R., Férec C., Lehn P., Benvegnu T., Montier T. // Int. J. Mol. Sci. 2013. V. 14. P. 1477–1501. https://doi.org/10.3390/ijms14011477
- 23. Wang S., Lee R.J., Cauchon G., Gorensteint D.G., Lowt P.S. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 3318–3322
- 24. Xu Z., Jin J., Siu L.K.S., Yao H., Sze J., Sun H., Kung H., Poon W.S., Ng S.S.M., Lin M.C. // Int. J. Pharm. 2012. V. 426. P. 182–192. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2012.01.009
- 25. Jones S.K., Sarkar A., Feldmann D.P., Hoffmann P., Merkel O.M. // Biomaterials. 2017. V. 138. P. 35–45. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2017.05.034
- 26. van der Aa M.A.E.M., Koning G.A., d’Oliveira C., Oosting R.S., Wilschut K.J., Hennink W.E., Crommelin D.J.A. // J. Gene Med. 2005. V. 7. P. 208–217. https://doi.org/10.1002/jgm.643
