Везде

ОБНБиоорганическая химия Russian Journal of Bioorganic Chemistry

  • ISSN (Print) 0132-3423
  • ISSN (Online) 1998-2860

8-ОКСО-2'-ДЕЗОКСИГУАНОЗИН – УПРАВЛЕНИЕ ОКИСЛИТЕЛЬНЫМ СТРЕССОМ

Вы можете
Код статьи
S19982860S0132342325050061-1
DOI
10.7868/S1998286025050061
Тип публикации
Обзор
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Мармий Н.В.
  • Аффилиация: Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, факультет биоинженерии и биоинформатики
Есипов Д.С.
  • Должность: кафедра биоорганической химии
  • Аффилиация:
    Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, факультет биоинженерии и биоинформатики
    Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, биологический факультет
Том/ Выпуск
Том 51 / Номер выпуска 5
Страницы
812-819
Аннотация
8-Оксо-2'-дезоксигуанозин – известный маркер окислительного стресса. Исследования последнего десятилетия показывают, что это соединение, вероятно, не является побочным продуктом окислительного повреждения ДНК, а представляет собой важный биорегулятор, управляющий клеточным ответом на стресс. В данном обзоре собраны и проанализированы данные об участии 8-оксо-2'-дезоксигуанозина в процессах мутагенеза, репарации ДНК и регуляции экспрессии генов, воспалительных реакциях, адаптивном ответе на стресс, апоптозе и трансформации клеток. Особое внимание уделено потенциалу 8-оксо-2'-дезоксигуанозина в качестве терапевтического агента при воспалительных, аутоиммунных, дегенеративных и онкологических заболеваниях, а также травматических и токсических повреждениях.
Ключевые слова
8-оксо-2'-дезоксигуанозин окислительный стресс репарация ДНК
Дата публикации
01.05.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
4

Библиография

  1. 1. Li P., Ramm G.A., Macdonald G.A. // Redox Biol. 2016. V. 8. P. 259–270. https://doi.org/10.1016/j.redox.2016.02.003
  2. 2. Tsukahara H., Shibata R., Ohshima Y., Todoroki Y., Sato S., Ohta N., Hiraoka M., Yoshida A., Nishima S., Mayumi M. // Life Sci. 2003. V. 72. P. 2509– 2516. https://doi.org/10.1016/s0024-3205 (03)00145-0
  3. 3. Di Minno A., Turnu L., Porro B., Squellerio I., Cavalca V., Tremoli E., Di Minno M.N. // Antioxid Redox Signal. 2016. V. 24. P. 548–555. https://doi.org/10.1089/ars.2015.6508
  4. 4. Lowe F.J., Luettich K., Gregg E.O. // Biomarkers Rev. 2013. V. 18. P. 183–195. https://doi.org/10.3109/1354750X.2013.777116
  5. 5. Kirkpatrick M., Benoit J., Everett W., Gibson J., Rist M., Fredette N. // Neurotoxicology. 2015. V. 50. P. 170–178. https://doi.org/10.1016/j.neuro.2015.07.001
  6. 6. Huang Y.K., Lin C.W., Chang C.C., Chen P.F., Wang C.J., Hsueh Y.M., Chiang H.C. // Eur. J. Appl. Physiol. 2012. V. 112. P. 4119–4126. https://doi.org/10.1007/s00421-012-2401-1
  7. 7. Escobar J., Teramo K., Stefanovic V., Andersson S., Asensi M.A., Arduini A., Cubells E., Sastre J., Vento M. // Neonatology. 2013. V. 103. P. 193–198. https://doi.org/10.1159/000345194
  8. 8. Есипов Д.С., Сидоренко Е.В., Есипова О.В., Горбачева Т.А., Невредимова Т.С., Крушинский А.Л., Кузенков В.С., Реутов В.П. // Вестник МИТХТ. 2010. Т. 5. С. 69–74.
  9. 9. Невредимова Т.С., Мармий Н.В., Есипов Д.С., Есипова О.В., Швец В.И. // Вестник МИТХТ. 2014. Т. 9. С. 3–10.
  10. 10. Мармий Н.В., Есипов Д.С. // Вестник Моск. ун-та. Серия 16. Биология. 2015. P. 19–23.
  11. 11. Черников А.В., Гудков С.В., Усачева А.М., Брусков В.И. // Усп. биол. химии. 2017. Т. 57. С. 267– 302.
  12. 12. Huh J.Y., Jung I., Piao L., Ha H., Chung M.H. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2017. V. 491. P. 890–896. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2017.07.132
  13. 13. Steinhubl S.R. // Am. J. Cardiol. 2008. V. 101. P. 14D– 19D. https://doi.org/10.1016/j.amjcard.2008.02.003
  14. 14. Kawanishi S., Oikawa S., Murata M. // Antioxid. Redox. Signal. 2005. V. 7. P. 1728–1739. https://doi.org/10.1089/ars.2005.7.1728
  15. 15. Hahm J.Y., Park J., Jang E.S., Chi S.W. // Exp. Mol. Med. 2022. V. 54. P. 1626–1642. https://doi.org/10.1038/s12276-022-00822-z
  16. 16. Zandvakili I., Lin Y., Morris J.C., Zheng Y. // Oncogene. 2017. V. 36. P. 3213–3222. https://doi.org/10.1038/onc.2016.473
  17. 17. Kuchino Y., Mori F., Kasai H., Inoue H., Iwai S., Miura K., Ohtsuka E., Nishimura S. // Nature. 1987. V. 327. P. 77–79. https://doi.org/10.1038/327077a0
  18. 18. Lowe L.G., Guengerich F.P. // Biochemistry. 1996. V. 35. P. 9840–9849. https://doi.org/10.1021/bi960485x
  19. 19. de Vega M., Salas M. // Nucleic Acids Res. 2007. V. 35. P. 5096–5107. https://doi.org/10.1093/nar/gkm545
  20. 20. Garrido P., Mejia E., Garcia-Diaz M., Blanco L., Picher A.J. // Nucleic. Acids Res. 2014. V. 42. P. 534–543. https://doi.org/10.1093/nar/gkt870
  21. 21. Taggart D.J., Fredrickson S.W., Gadkari, Suo Z. // Chem. Res. Toxicol. 2014. V. 27. P. 931–940. https://doi.org/10.1021/tx500088e
  22. 22. Whitaker A.M., Smith M.R., Schaich M.A., Freudenthal B.D. // Nucleic. Acids Res. 2017. V. 45. P. 6934–6944. https://doi.org/10.1093/nar/gkx293
  23. 23. Johansen M.E., Muller J.G., Xu X., Burrows C.J. // Biochemistry. 2005. V. 44. P. 5660–5671. https://doi.org/10.1021/bi047580n
  24. 24. Kawanishi S., Oikawa S. // Ann. NY Acad. Sci. 2004. V. 1019. P. 278–284. https://doi.org/10.1196/annals.1297.047
  25. 25. Morero N.R., Argaraña C.E. // FEMS Microbiol. Lett. 2009. V. 290. P. 217–226. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2008.01411.x
  26. 26. Völker J., Plum G.E., Klump H.H., Breslauer K.J. // Biopolymers. 2010. V. 93. P. 355–369. https://doi.org/10.1002/bip.21343
  27. 27. De Luca G., Russo M.T., Degan P., Tiveron C., Zijno A., Meccia E., Ventura I., Mattei E., Nakabeppu Y., Crescenzi M., Pepponi R., Pèzzola A., Popoli P., Bignami M. // PLoS Genet. 2008. V. 4. P. e1000266. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1000266
  28. 28. Nguyen K.V., Burrows C.J. // J. Am. Chem. Soc. 2011. V. 133. P. 14586–14589. https://doi.org/10.1021/ja2072252
  29. 29. Moore J.M., Correa R., Rosenberg S.M., Hastings P.J. // PLoS Genet. 2017. V. 13. P. e1006733 . https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1006733
  30. 30. An J., Yin M., Yin J., Wu S., Selby C.P., Yang Y., Sancar A., Xu G.L., Qian M., Hu J. // Nucleic. Acids Res. 2021. V. 49. P. 12252–12267. https://doi.org/10.1093/nar/gkab1022
  31. 31. Stebbeds W.J.D., Lunec J., Larcombe L.D. // PLoS One. 2012. V. 7. P. e43735. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0043735
  32. 32. Pastukh V., Roberts J.T., Clark D.W., Bardwell G.C., Patel M., Al-Mehdi A.B., Borchert G.M., Gillespie M.N. // Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 2015. V. 309. P. 1367–1375. https://doi.org/10.1152/ajplung.00236.2015
  33. 33. Terzidis M.A., Prisecaru A., Molphy Z., Barron N., Randazzo A., Dumont E., Krokidis M.G., Kellett A., Chatgilialoglu C. // Free Radic. Res. 2016. V. 50. P. S91–S101. https://doi.org/10.1080/10715762.2016.1244820
  34. 34. Perillo B., Ombra M.N., Bertoni A., Cuozzo C., Sacchetti S., Sasso A., Chiariotti L., Malorni A., Abbondanza C., Avvedimento E.V. // Science. 2008. V. 319. P. 202–206. https://doi.org/10.1126/science.1147674
  35. 35. Zarakowska E., Gackowski D., Foksinski M., Olinski R. // Mutat. Res. Genet. Toxicol. Environ. Mutagen. 2014. V. 764–765. P. 58–63. https://doi.org/10.1016/j.mrgentox.2013.09.002
  36. 36. Ma L.S., Jiang C.J., Cui M., Lu R., Liu S.S., Zheng B.B., Li L., Li X. // Acta Pharmacol. Sin. 2013. V. 34. P. 1093– 1100. https://doi.org/10.1038/aps.2013.44
  37. 37. Fleming A.M., Ding Y., Burrows C.J. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2017. V. 114. P. 2604–2609. https://doi.org/10.1073/pnas.1619809114
  38. 38. Hong G.U., Kim N.G., Jeoung D., Ro J.Y. // J. Neuro-immunol. 2013. V. 260. P. 60–73. https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2013.04.002
  39. 39. Kim J.S., Kim D.Y., Lee J.K., Ro J.Y., Chung M.H. // Eur. J. Pharmacol. 2011. V. 651. P. 218–226. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2010.10.087
  40. 40. Huh J.Y., Son D.J., Lee Y., Lee J., Kim B., Lee H.M., Jo H., Choi S., Ha H., Chung M.H. // Free Radic. Biol. Med. 2012. V. 53. P. 109–121. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2012.03.023
  41. 41. Ock C.Y., Kim E.H., Choi D.J., Lee H.J., Hahm K.B., Chung M.H. // World J. Gastroenterol. 2012. V. 18. P. 302–308. https://doi.org/10.3748/wjg.v18.i4.302
  42. 42. Kim D.H., Cho I.H., Kim H.S., Jung J.E., Kim J.E., Hong G.U., Kim N.G., Ro J.Y. // Radiat. Res. 2014. V. 181. P. 425–438. https://doi.org/10.1667/rr13547.1
  43. 43. Ko S.H., Lee J.K., Lee H.J., Ye S.K., Kim H.S., Chung M.H. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2014. V. 443. P. 610–616. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2013.12.018
  44. 44. Shin S.K., Kim K.O., Kim S.H., Kwon O.S., Choi C.S., Jeong S.H., Kim Y.S., Kim J.H., Chung M.H. // J. Gastroenterol. Hepatol. 2020. V. 35. P. 1078–1087. https://doi.org/10.1111/jgh.14979
  45. 45. Kim H.S., Ye S.K., Cho I.H., Jung J.E., Kim D.H., Choi S., Kim Y.S., Park C.G., Kim T.Y., Lee J.W., Chung M.H. // Free Radic. Biol. Med. 2006. V. 41. P. 1392–1403. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2006.07.018
  46. 46. Choi S., Choi H.H., Lee S.H., Ko S.H., You H.J., Ye S.K., Chung M.H. // Free Radic. Biol. Med. 2007. V. 43. P. 1594–1603. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2007.08.022
  47. 47. Choi S., Choi H.H., Choi J.H., Yoon B.H., You H.J., Hyun J.W., Kim J.E., Ye S.K., Chung M.H. // Leuk. Res. 2006. V. 30. P. 1425–1436. https://doi.org/10.1016/j.leukres.2006.03.020
  48. 48. Lee J.K., Ko S.H., Ye S.K., Chung M.H. // J. Dermatol. Sci. 2013. V. 70. P. 49–57. https://doi.org/10.1016/j.jdermsci.2013.01.010
  49. 49. Hwang S., Kim S.H., Yoo K.H., Chung M.H., Lee J.W., Son K.H. // BMC Mol. Cell Biol. 2022. V. 23. P. 55. https://doi.org/10.1007/s00421-012-2401-1
  50. 50. Hajas G., Bacsi A., Aguilera-Aguirre L., Hegde M.L., Tapas K.H., Sur S., Radak Z., Ba X., Boldogh I. // Free Radic. Biol. Med. 2013. V. 61. P. 384–394. https://doi.org/10.1074/jbc.M116.751453
  51. 51. Kostyuk S., Tabakov V.J., Chestkov V.V., Konkova M.S., Glebova K.V., Baydakova G.V., Ershova E.S., Izhevskaya V.L., Baranova A., Veiko N.N. // Mutat. Res. 2013. V. 747–748. P. 6–18. https://doi.org/10.3390/genes13122283
  52. 52. Hyun J.W., Jung Y.C., Kim H.S., Choi E.Y., Kim J.E., Yoon B.H., Yoon S.H., Lee Y.S., Choi J., You H.J., Chung M.H. // Mol. Cancer Res. 2003. V. 1. P. 290– 299. https://aacrjournals.org/mcr/article/1/4/290/232239/8- Hydroxydeoxyguanosine-Causes-Death-of-Human
  53. 53. Park J.M., Han Y.M., Jeong M., Chung M.H., Kwon C., Ko K.H., Hahm K.B. // Free Radic. Biol. Med. 2017. V. 110. P. 151–161. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2017.06.003
  54. 54. Pazmandi K., Agod Z., Kumar B.V., Szabo A., Fekete T., Sogor V., Veres A., Boldogh I., Rajnavolgyi E., Lanyi A., Bacsi A. // Free Radic. Biol. Med. 2014. V. 77. P. 281– 290. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2014.09.028
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека