Везде

ОБНБиоорганическая химия Russian Journal of Bioorganic Chemistry

  • ISSN (Print) 0132-3423
  • ISSN (Online) 1998-2860

МОЛЕКУЛЯРНЫЕ ВИДЫ МЕМБРАННЫХ ЛИПИДОВ МОРСКОГО АНЕМОНА Exaiptasia diaphana И ЕГО СИМБИОНТОВ

Вы можете
Код статьи
S19982860S0132342325040107-1
DOI
10.7868/S1998286025040107
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Бизикашвили Е. T.
  • Аффилиация: Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН
Козловский С. А.
  • Аффилиация: Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН
Ермоленко Е. В.
  • Аффилиация: Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН
Ефимова К. В.
  • Аффилиация: Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН
Сикорская Т. В.
  • Аффилиация: Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жираунского Дальневосточного отделения РАН
Том/ Выпуск
Том 51 / Номер выпуска 4
Страницы
654-666
Аннотация
Методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием исследованы молекулярные виды мембранных липидов морского анемона Exaiptasia diaphana и молекулярные виды гликолипидов его симбионтов. Всего было идентифицировано 82 молекулярных вида глицерофосфолипидов E. diaphana, основными из которых были холинглицерофосфолипид (PC) 16:0/22:6, этаноламинглицерофосфолипиды (PE) 18:1e/20:4 и 18:1e/20:5, серинглицерофосфолипид (PS) 18:0/22:4, инозигглицерофосфолипид (PI) 18:0/22:4 и церамидаминоэтилфосфонат (CAEP) 18:2b/16:0. У симбионтов было идентифицировано 36 молекулярных видов гликолипидов. Основными молекулярными видами были моногалактозилдиацилглицерол (MGDG) 18:4/18:5, дигалактозилдиацилглицеролы DGDG 18:3/18:5 и 18:4/18:4, сульфохиновозилдиацилглицерол (SQDG) 14:0/16:0. С помощью молекулярно-генетического анализа было установлено, что все колонии E. diaphana содержали динофлагелляты Breviolum minutum, Cladocopium thermophilum и Gerakladium endoclionum. Профиль молекулярных видов липидов организма-хозяина может выступать хемотаксономическим признаком, а галактолипиды симбионтов могут указывать на устойчивость к изменению температуры морской воды. Данное исследование вносит вклад в развитие липидомики организмов типа Cnidaria.
Ключевые слова
морские анемоны фосфолипиды гликолипиды тандемная масс-спектрометрия липидомика молекулярные виды липидов
Дата публикации
28.01.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
9

Библиография

  1. 1. Bogdanov M., Dowhan W. // J. Biol. Chem. 1999. V. 274. P. 36827–36830. https://doi.org/10.1074/jbc.274.52.36827
  2. 2. Daly M., Brugler M.R., Cartwright P., Collins A.G., Davson M.N., Fautin D.G., France S.C., Mcfadden C.S., Opresko D.M., Rodriguez E., Romano S.L., Stake J.L. // Zootaxa. 2007. V. 1668. P. 127–182. https://doi.org/10.5281/zenodo.180149
  3. 3. Madio B., King G.F., Undheim E.A.B. // Mar. Drugs. 2019. V. 17. P. 325. https://doi.org/10.3390/md17060325.
  4. 4. Garrett T.A., Schmeitzel J.L., Klein J.A., Hwang J.J., Schwarz J.A. // PLoS One. 2013. V. 8. P. e57975. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0057975
  5. 5. Muscatine L. // Science. 1967. V. 156. P. 516–519. https://doi.org/10.1126/science.156.3774.516
  6. 6. Dungan A.M., Hartman L.M., Tortorelli G., Belderok R., Lamb A.M., Pisan L., McFadden G.I., Blackall L.L., van Oppen M.J.H. // Symbiosis. 2020. V. 80. P. 195–206. https://doi.org/10.1007/s13199-020-00665-0
  7. 7. Weis V.M., Davy S.K., Hoegh-Guldberg O., Rodriguez-Lanetty M., Pringle J.R. // Trends Ecol. Evol. 2008. V. 23. P. 369–376. https://doi.org/10.1016/j.tree.2008.03.004
  8. 8. Yamashiro H., Okui H., Higa H., Chinen I., Sakai K. // Comp. Biochem. Phys. B. 1999. V. 122. P. 397–407. https://doi.org/10.1016/S0305-0491 (99)00014-0
  9. 9. Sikorskaya T.V., Imbs A.B. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2020. V. 46. P. 643–656. https://doi.org/10.1134/S1068162020050234
  10. 10. Bishop D.G., Kenrick J.R. // Lipids. 1980. V. 15. P. 799–804. https://doi.org/10.1007/BF02534368
  11. 11. Imbs A.B., Rybin V.G., Kharlamenko V.I., Dang L.P.T., Nguyen N.T., Pham K.M., Pham L.Q. // Russ. J. Mar. Biol. 2015. V. 41. P. 461–467. https://doi.org/10.1134/S1063074015060048
  12. 12. Sikorskaya T.V. // Mar. Drugs. 2023. V. 21. P. 335. https://doi.org/10.3390/md21060335
  13. 13. Rosset S., Koster G., Brandsma J., Hunt A.N., Postle A.D., D’Angelo C. // Coral Reefs. 2019. V. 38. P. 1241–1253. https://doi.org/10.1007/s00338-019-01865-x
  14. 14. Sikorskaya T.V., Efimova K.V., Imbs A.B. // Phytochemistry. 2021. V. 181. P. 112579. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2020.112579
  15. 15. Weis V.M. // Integr. Comp. Biol. 2019. V. 59. P. 845–855. https://doi.org/10.1093/icb/icz067
  16. 16. Tehernov D., Gorbunov M.Y., de Vargas C., Narayan Yadav S., Milligan A.J., Häggblom M., Falkowski P.G. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. V. 37. P.13531–13535. https://doi.org/10.1073/pnas.0402907101
  17. 17. Sikorskaya T.V., Ermolenko E.V., Gimanova T.T., Boroda A.V., Efimova K.V., Bogdanov M. // Commun. Biol. 2024. V. 7. P. 878. https://doi.org/10.1038/s42003-024-06578-8
  18. 18. Sikorskaya T.V., Ermolenko E.V., Efimova K.V., Dang L.T.P. // Mar. Drugs. 2022. V. 20. P. 485. https://doi.org/10.3390/md20080485
  19. 19. Dean J.M., Lodhi I.J. // Protein Cell. 2018. V. 9. P. 196–206. https://doi.org/10.1007/s13238-017-0423-5
  20. 20. Lohner K. // Chem. Phys. Lipids. 1996. V. 81. P. 167–184. https://doi.org/10.1016/0009-3084 (96)02580-7
  21. 21. Kay J.G., Fairn G.D. // Cell Commun. Signal. 2019. V. 17. P. 126. https://doi.org/10.1186/s12964-019-0438-z
  22. 22. Tomonaga N., Manabe Y., Sugawara T. // Lipids. 2017. V. 52. P. 353–362. https://doi.org/10.1007/s11745-011-3556-y
  23. 23. Chintalahti M., Truax R., Stout R., Portier R., Losso J.N. // J. Agric. Food Chem. 2009. V. 57. P. 5201–5210. https://doi.org/10.1021/jf803818y
  24. 24. Garrett T.A., Hwang J., Schmeitzel J.L., Schwarz J. // FASEB J. 2011. V. 25. P. 938.2. https://doi.org/10.1096/fasebj.25.1_supplement.938.2
  25. 25. Imbs A.B., Latyshev N.A., Dautova T.N., Latypov Y.Y. // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2010. V. 409. P. 65–75. https://doi.org/10.3354/meps08622
  26. 26. Flaim G., Oberlegger U., Anest A., Guella G. // Freshwater Biol. 2014. V. 59. P. 985–997. https://doi.org/10.1111/fwb.12321
  27. 27. Känzler K., Eichenberger W., Radunz A. // Z. Naturforsch. C. J. Biosci. 1997. V. 52. T. 487–495.
  28. 28. Höizl G., Dörmann P. // Annu. Rev. Plant Biol. 2019. V. 70. P. 51–81. https://doi.org/10.1146/annurev-arplant-050718-100202
  29. 29. Boudière L., Michaud M., Petroutsos D., Rébeille F., Falconer D., Bastien O., Roy S., Finazzi G., Rolland N., Jouhet J., Block M.A., Maréchal E. // Biochim. Biophys. Acta. 2014. V. 1837. P. 470–480. https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2013.09.007
  30. 30. Botana T.M., Chaves-Filho A.B., Inague A., Güth, A.Z., Saldanha-Correa F., Müller M.N., Sumida P.Y.G., Miyamoto S., Kellermann M.Y., Valentine R.C., Yoshinaga M.Y. // Limnol. Oceanogr. 2022. V. 67. P. 1456–1469. https://doi.org/10.1002/lno.12094
  31. 31. Baumgartner S., Simakov O., Esherick L.Y., Liew Y.J., Lehnert E.M., Michell C.T., Li Y., Hambleton E.A., Guse A., Oates M.E., Gough J., Weis V.M., Aranda M., Pringle J.R., Voolstra C.R. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015. V. 112. P. 11893–11898. https://doi.org/10.1073/pnas.1513318112
  32. 32. Thornhill D.J., Xiang Y., Pettay D.T., Zhong M., Santos S.R. // Mol. Ecol. 2013. V. 22. P. 4499–4515. https://doi.org/10.1111/mec.12416
  33. 33. Nunez-Pons L., Bertocci I., Baghdasarian G. // Mar. Environ. Res. 2017. V. 130. P. 303–314. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2017.08.005
  34. 34. Ramsby B.D., Hill M.S., Thornhill D.J., Steenhutzen S.F., Achlatis M., Lewis A.M., LaJeunesse T.C. // J. Psychol. 2017. V. 53. P. 951–960. https://doi.org/10.1111/jpy.12576
  35. 35. Folch J., Lees M., Sloane-Stanley G.A. // J. Biol. Chem. 1957. V. 226. P. 497–509. https://doi.org/10.1016/S0021-9258 (18)64849-5
  36. 36. Sikorskaya T.V., Ermolenko E.V., Imbs A.B. // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2020. V. 524. P. 151295. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2019.151295
  37. 37. Imbs A.B., Dang L.P.T., Nguyen K.B. // PLoS One. 2019. V. 14. P. e0215759. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0215759
  38. 38. Scholin C.A., Herzog M., Sogin M., Anderson D.M. // J. Psychol. 1994. V. 30. P. 999–1011. https://doi.org/10.1111/j.0022-3646.1994.00999.x
  39. 39. van Oppen M.J., McDonald B.J., Willis B., Miller D.J. // Mol. Biol. Evol. 2001. V. 18. P. 1315–1329. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a003916
  40. 40. Altschul S.F., Gish W., Miller W., Myers E.W., Lipman D.J. // J. Mol. Biol. 1990. V. 215. P. 403–410. https://doi.org/10.1016/S0022-2836 (05)80360-2
  41. 41. Katoh K., Rozewicki J., Yamada K.D. // Brief Bioinform. 2019. V. 20. P. 1160–1166. https://doi.org/10.1093/bib/bbx108
  42. 42. Hume B.C., D’Angelo C., Smith E.G., Stevens J.R., Burt J., Wedermann J. // Sci. Rep. 2015. V. 5. P. 8562. https://doi.org/10.1038/srep08562
  43. 43. Puillandre N., Brouillet S., Achaz G. // Mol. Ecol. Resour. 2021. V. 21. P. 609–620. https://doi.org/10.1111/1755-0998.13281
  44. 44. Nguyen L.T., Schmidt H.A., von Haeseler A., Minh B.Q. // Mol. Biol. Evol. 2015. V. 32. P. 268–274. https://doi.org/10.1093/molbev/msu300
  45. 45. Kalyaanamoorthy S., Minh B.Q., Wong T.K.F., von Haeseler A., Jermlin L.S. // Nat. Methods. 2017. V. 14. P. 587–589. https://doi.org/10.1038/nmeth.4285
  46. 46. Guindon S., Dufayard J.F., Lefort V., Anisimova M., Hordijk W., Gascuel O. // Syst. Biol. 2010. V. 59. P. 307–321. https://doi.org/10.1093/sysbio/syq010
  47. 47. Hoang D.T., Chermomor O., von Haeseler A., Minh B.Q., Vinh L.S. // Mol. Biol. Evol. 2018. V. 35. P. 518–522. https://doi.org/10.1093/molbev/msx281
  48. 48. Anisimova M., Gil M., Dufayard J.F., Dessimoz C., Gascuel O. // Syst. Biol. 2011. V. 60. P. 685–699. https://doi.org/10.1093/sysbio/syr041
  49. 49. Viso A.C., Marty J.C. // Phytochemistry. 1993. V. 34. P. 1521–1533. https://doi.org/10.1016/s0031-9422 (00)90839-2
  50. 50. Rezanka T., Siristova L., Matoullková D., Sigler K. // Lipids. 2011. V. 46. P. 765–780. https://doi.org/10.1007/s11745-011-3556-y
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека