ОБНБиоорганическая химия Russian Journal of Bioorganic Chemistry

  • ISSN (Print) 0132-3423
  • ISSN (Online) 1998-2860

С-КОНЦЕВОЙ ДОМЕН ГЕМОЛИЗИНА II Bacillus cereus СПОСОБЕН ОБРАЗОВЫВАТЬ ГОМО- И ГЕТЕРООЛИГОМЕРНЫЕ ФОРМЫ ТОКСИНА НА ПОВЕРХНОСТИ МЕМБРАНЫ

Код статьи
S19982860S0132342325040071-1
DOI
10.7868/S1998286025040071
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 51 / Номер выпуска 4
Страницы
627-635
Аннотация
Гемолизин II (НlyII) – один из ключевых патогенных факторов условно-патогенной грамположительной бактерии Bacillus cereus. НlyII, образуя поры на мембранах, лизирует клетки-мишени. НlyII относят к группе β-пороформирующих токсинов. Отличительная особенность НlyII – наличие C-концевого домена из 94 а.о. (НlyIICTD). Показано, что в слабокислых условиях (pH 5.0), соответствующих примембранной области, C-концевые домены (как сами по себе, так и в составе токсина) образуют устойчивые комплексы, состоящие из полиоразмерных и укороченных молекул токсина. НlyII, НlyIILCTD (большой C-концевой фрагмент Met225–Ile412) и НlyIICTD получали с использованием рекомбинантных штаммов-продуцентов Escherichia coli BL21(DE3). Биотинилирование НlyIICTD проводили с использованием N-гидроксисукцинимидного эфира биотина. Взаимодействие НlyIICTD с НlyIICTD, НlyIILCTD и НlyII, а также взаимодействие НlyIICTD с мембранами эритроцитов исследовали иммуноферментным анализом и иммунобиоттингом, как с использованием стрептавидина, конъюгированного с пероксидазой хрена, так и с использованием моноклональных антител против НlyII. НlyIICTD в слабокислых условиях взаимодействовал как с доменом НlyIICTD в составе полиоразмерного токсина, так и с белком НlyIICTD. Взаимодействие НlyIICTD с мембраной эритроцитов кратно увеличивалось в присутствии токсина.
Ключевые слова
порообразующий токсин C-концевой домен гемолизина II Bacillus cereus конформация белков плазматическая мембрана иммуноферментный анализ
Дата публикации
12.02.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
12

Библиография

  1. 1. Logan N.A. // J. Appl. Microbiol. 2012. V. 112. P. 417–429. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2011.05204.x
  2. 2. Thery M., Cousin V.L., Tissieres P., Enault M., Morin L. // Front. Pediatr. 2022. V. 10. P. 978250. https://doi.org/10.3389/fped.2022.978250
  3. 3. Ramarao N., Sanchis V. // Toxins. 2013. V. 5. P. 1119–1139. https://doi.org/10.3390/toxins5061119
  4. 4. Miles G., Bayley H., Cheley S. // Protein Sci. 2002. V. 11. P. 1813–1824. https://doi.org/10.1110/ps.0204002
  5. 5. Hu H., Liu M., Sun S. // Drug Des. Dev. Ther. 2021. V. 15. P. 3773–3781. https://doi.org/10.2147/DDDT.S322393
  6. 6. Patino-Navarrete R., Sanchis V. // Res. Microbiol. 2017. V. 168. P. 309–318. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2016.07.002
  7. 7. Cadot C., Tran S.L., Yignaud M.L., de Buyser M.L., Kolsio A.B., Brisabois A., Nguyen-Thé C., Lerechts D., Guinebretière M.H., Ramarao N. // J. Clin. Microbiol. 2010. V. 48. P. 1358–1365. https://doi.org/10.1128/JCM.02123-09
  8. 8. Rudenko N.V., Karatovskaya A.P., Zamyatina A.V., Siunov A.V., Andreeva-Kovalevskaya Z.A., Nagel A.S., Brovko F.A., Solonin A.S. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2020. V. 46. P. 321–326. https://doi.org/10.1134/S1068162020030188
  9. 9. Rudenko N., Siunov A., Zamyatina A., Melnik B., Nagel A., Karatovskaya A., Borisova M., Shepelyakovskaya A., Andreeva-Kovalevskaya Zh., Kolesnikov A., Surin A., Brovko F., Solonin A. // Int. J. Biol. Macromol. 2022. V. 200. P. 416–427. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2022.01.013
  10. 10. Kaplan A.R., Kaus K., De S., Olson R., Alexandrescu A.T. // Sci. Rep. 2017. V. 1. P. 3277. https://doi.org/10.1038/s41598-017-02917-4
  11. 11. Kaplan A.R., Maciejewski M.W., Olson R., Alexandrescu A.T. // Biomol. NMR Assign. 2014. V. 2. P. 419–423. https://doi.org/10.1007/s12104-013-9530-2
  12. 12. Nagel A.S., Rudenko N.V., Luchkina P.N., Karatovskaya A.P., Zamyatina A.V., Andreeva-Kovalevskaya Z.I., Siunov A.V., Brovko F.A., Solonin A.S. // Molecules. 2023. V. 28. P. 3581. https://doi.org/10.3390/molecules28083581
  13. 13. Nagel A.S., Vetrova O.S., Rudenko N.V., Karatovskaya A.P., Zamyatina A.V., Andreeva-Kovalevskaya Z.I., Salyamov V.I., Egorova N.A., Siunov A.V., Ivanova T.D., Boziev K.M., Brovko F.A., Solonin A.S. // Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. P. 5327. https://doi.org/10.3390/ijms25105327
  14. 14. Bychkova V.E., Dolgikh D.A., Balobanov V.A., Finkelstein A.V. // Molecules. 2022. V. 27. P. 4361. https://doi.org/10.3390/molecules27144361.
  15. 15. Engelman D.M. // Nature. 2005. V. 438. P. 578–580. https://doi.org/10.1038/nature04394
  16. 16. Von Meer G., Voelker D.R., Feigenson G.W. // Mol. Cell Biol. 2008. V. 9. P. 112–124. https://doi.org/10.1038/nrm2330
  17. 17. Eisenberg M., Gresdff T., Riccio T., McLaughlin S. // Biochemistry. 1979. V. 18. P. 5213–5223. https://doi.org/10.1021/bi00594a028
  18. 18. Prats M., Teissie J., Toccane J.F. // Nature. 1986. V. 322. P. 756–758. https://doi.org/10.1038/322756a0
  19. 19. Wintiski A.P., McLaughlin A.C., McDaniel R.V., Eisenberg M., McLaughlin S. // Biochemistry. 1986. V. 25. P. 8206–8214. https://doi.org/10.1021/bi00373a013
  20. 20. Galassi V.V., Wilke N. // Membranes (Basel). 2021. V. 11. P. 478. https://doi.org/10.3390/membranes11070478
  21. 21. Ptitsyn O.B. // Adv. Protein Chem. 1995. V. 47. P. 83–229. https://doi.org/10.1016/s0065-3233 (08)60546-x
  22. 22. Bychkova V.E., Ptitsyn O.B. // Chemtracts Biochem. Mol. Biol. 1993. V. 4. P. 133–163.
  23. 23. Kaplan A.R. // Adventures in structural and exploring protein conformational plasticity by NMR. Doctoral Dissertations, Connecticut: University of Connecticut, Storrs, 2019. 129 pp.
  24. 24. Andreeva Z.I., Nesterenko V.F., Yarkov I.S., Budarina Z.I., Sineva E.V., Solonin A.S. // Protein Expr. Purif. 2006. V. 47. P. 186–193. https://doi.org/10.1016/j.pep.2005.10.030
  25. 25. Chang S.F., Chen C.N., Lin J.C., Wang H.E., Mori S., Li J.J., Yen C.K., Hsu C.Y., Fung C.P., Chong P.C., Leng C.H., Ding Y.J., Chang F.Y., Siu L.K. // Cells. 2020. V. 9. P. 1183. https://doi.org/10.3390/cells9051183
  26. 26. Blandine G., Popoff M.R // Biol. Cell. 2006. V. 98. P. 667–678. https://doi.org/10.1042/BC20050082
  27. 27. Peraro M.D., van der Goot F.G. // Nat. Rev. Microbiol. 2015. V. 14. P. 77–92. https://doi.org/10.1038/nrmicro.2015.3
  28. 28. Margheritis E., Kappelloff S., Cosentino K. // Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. P. 4528. https://doi.org/10.3390/ijms24054528
  29. 29. Iacovache I., Bischofberger M., van der Goot F.G. // Curr. Opin. Struct. Biol. 2010. V. 20. P. 241–246. https://doi.org/10.1016/j.sbi.2010.01.013
  30. 30. Li Y., Li Y., Mengist H.M., Shi C., Zhang C., Wang B., Li T., Huang Y., Xu Y., Jin T. // Toxins (Basel). 2021. V. 13. P. 128. https://doi.org/10.3390/toxins13020128
  31. 31. Laemmli U.K. // Nature. 1970. V. 5259. P. 680–685. https://doi.org/10.1038/227680a0
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека