ОБНБиоорганическая химия Russian Journal of Bioorganic Chemistry

  • ISSN (Print) 0132-3423
  • ISSN (Online) 1998-2860

Дизайн генно-инженерных конструкций, выделение и очистка мономерной формы рецептора GPR17 класса GPCR для структурно-функциональных исследований

Код статьи
S0132342325010086-1
DOI
10.31857/S0132342325010086
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 51 / Номер выпуска 1
Страницы
82-93
Аннотация
Рецепторы, сопряженные с G-белком (GPCR), – это семейство семиспиральных трансмембранных белков, состоящее более чем из 800 представителей в геноме человека, играющих ключевую роль в регуляции большинства процессов в организме и являющихся мишенями для трети всех современных лекарств. Многие GPCR, несмотря на значимость для фармакологии, до сих пор орфанные, т.е. эндогенный лиганд для них неизвестен. Орфанный рецептор GPR17, относящийся к классу А GPCR, экспрессируется преимущественно в центральной нервной системе, играет важную роль в регуляции образования миелиновой оболочки нейронов и представляет собой потенциальную мишень для разработки новых лекарственных препаратов против рассеянного склероза, болезни Альцгеймера и ишемии. Цель данной работы заключалась в подготовке GPR17 для структурно-функциональных исследований, начиная с модификации рецептора и заканчивая получением белкового препарата. Был проведен скрининг различных генно-инженерных конструкций, проанализирован ряд точечных мутаций, а также проверено значительное число потенциальных лигандов данного рецептора. В результате работы оптимизированы условия экспрессии, выделения и очистки GPR17, что в совокупности позволило получить достаточно стабильный и мономерный белковый препарат, подходящий для дальнейших структурных исследований.
Ключевые слова
GPCR GPR17 стабилизация белка
Дата публикации
09.11.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
44

Библиография

  1. 1. Kuneš J., Hojná S., Mráziková L., Montezano A., Touyz R., Maletínská L. // Physiol Res. 2023. V. 72. P. S73–S90. https://doi.org/10.33549/physiolres.935109
  2. 2. Marucci G., Dal Ben D., Lambertucci C., Martí Navia A., Spinaci A., Volpini R., Buccioni M. // Exp. Opin. Ther. Pat. 2019. V. 29. P. 85–95. https://doi.org/10.1080/13543776.2019.1568990
  3. 3. Dziedzic A., Miller E., Saluk-Bijak J., Bijak M. // Int. J. Mol. Sci. 2020. V. 21. P. 1852. https://doi.org/10.3390/ijms21051852
  4. 4. Ou Z., Sun Y., Lin L., You N., Liu X., Li H., Ma Y., Cao L., Han Y., Liu M., Deng Y., Yao L., Lu Q.R., Chen Y. // J. Neurosci. 2016. V. 36. P. 10560–10573. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.0898-16.2016
  5. 5. Yan S., Conley J.M., Reilly A.M., Stull N.D., Abhyankar S.D., Ericsson A.C., Kono T., Molosh A.I., Kubal C.A., Evans-Molina C., Ren H. // Cell Rep. 2022. V. 38. P. 110179. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2021.110179
  6. 6. Ren H., Cook J. R., Kon N., Accili D. // Diabetes. 2015. V. 64. P. 3670–3679. https://doi.org/10.2337/db15-0390
  7. 7. Sriram K., Insel P.A. // Mol. Pharmacol. 2018. V. 93. P. 251–258. https://doi.org/10.1124/mol.117.111062
  8. 8. Khorn P.A., Luginina A.P., Pospelov V.A., Dashevsky D.E., Khnykin A.N., Moiseeva O.V., Safronova N.A., Belousov A.S., Mishin A.V., Borshchevsky V.I. // Biochemistry (Moscow). 2024. V. 89. P. 747–764. https://doi.org/10.1134/S0006297924040138
  9. 9. Ye F., Wong T., Chen G., Zhang Z., Zhang B., Gan S., Gao W., Li J., Wu Z., Pan X., Du Y. // MedComm (Beijing). 2022. V. 3. P. e159. https://doi.org/10.1002/mco2.159
  10. 10. Van Montfort R.L.M., Workman P. // Essays Biochem. 2017. V. 61. P. 431–437. https://doi.org/10.1042/EBC20170052
  11. 11. Chun E., Thompson A.A., Liu W., Roth C.B., Griffith M.T., Katritch V., Kunken J., Xu F., Cherezov V., Hanson M.A., Stevens R.C. // Structure. 2012. V. 20. P. 967–976. https://doi.org/10.1016/j.str.2012.04.010
  12. 12. Гусач А.Ю. // Структурные исследования человеческого цистеинил-лейкотриенового рецептора второго типа для создания новых лекарственных препаратов. Дис. канд. физ.-мат. наук, МФТИ, Москва, 2020.
  13. 13. Ballesteros J.A., Weinstein H. // Methods Neurosci. 1995. V. 25. P. 366–428. https://doi.org/10.1016/S1043-9471 (05)80049-7
  14. 14. Bläsius R., Weber R.G., Lichter P., Ogilvie A. // J. Neurochem. 1998. V. 70. P. 1357–1365. https://doi.org/10.1046/j.1471-4159.1998.70041357.x
  15. 15. Cherezov V., Abola E., Stevens R.C. // Methods Mol. Biol. 2010. P. 141–168. https://doi.org/10.1007/978-1-60761-762-4_8
  16. 16. Popov P., Peng Y., Shen L., Stevens R.C., Cherezov V., Liu Z.J., Katritch V. // Elife. 2018. V. 7. P. e34729. https://doi.org/10.7554/eLife.34729
  17. 17. Alexandrov A.I., Mileni M., Chien E.Y.T., Hanson M.A., Stevens R.C. // Structure. 2008. V. 16. P. 351–359. https://doi.org/10.1016/j.str.2008.02.004
  18. 18. Luginina A., Gusach A., Marin E., Mishin A., Brouillette R., Popov P., Shiriaeva A., Besserer-Offroy É., Longpré J.M., Lyapina E., Ishchenko A., Patel N., Polovinkin V., Safronova N., Bogorodskiy A., Edelweiss E., Hu H., Weierstall U., Liu W., Batyuk A., Gordeliy V., Han G. W., Sarret P., Katritch V., Borshchevskiy V., Cherezov V. // Sci. Adv. 2019. V. 5. P. eaax2518. https://doi.org/10.1126/sciadv.aax2518
  19. 19. Ciana P., Fumagalli M., Trincavelli M.L., Verderio C., Rosa P., Lecca D., Ferrario S., Parravicini C., Capra V., Gelosa P., Guerrini U., Belcredito S., Cimino M., Sironi L., Tremoli E., Rovati G.E., Martini C., Abbracchio M.P. // EMBO J. 2006. V. 25. P. 4615–4627. https://doi.org/10.1038/sj.emboj.7601341
  20. 20. Maekawa A., Balestrieri B., Austen K.F., Kanaoka Y. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2009. V. 106. P. 11685– 11690. https://doi.org/10.1073/pnas.0905364106
  21. 21. Benned-Jensen T., Rosenkilde M.M. // Br. J. Pharmacol. 2010. V. 159. P. 1092–1105. https://doi.org/10.1111/j.1476-5381.2009.00633.x
  22. 22. Qi A.D., Harden T.K., Nicholas R.A. // J. Pharmacol. Exp. Ther. 2013. V. 347. P. 38–46. https://doi.org/10.1124/jpet.113.207647
  23. 23. Hennen S., Wang H., Peters L., Merten N., Simon K., Spinrath A., Blättermann S., Akkari R., Schrage R., Schröder R., Schulz D., Vermeiren C., Zimmermann K., Kehraus S., Drewke C., Pfeifer A., König G.M., Mohr K., Gillard M., Müller C.E., Lu Q.R., Gomeza J., Kostenis E. // Sci. Signal. 2013. V. 6. P. ra93. https://doi.org/10.1126/scisignal.2004350
  24. 24. Merten N., Fischer J., Simon K., Zhang L., Schröder R., Peters L., Letombe A., Hennen S., Schrage R., Bödefeld T., Vermeiren C., Gillard M., Mohr K., Lu Q.R., Brüstle O., Gomeza J., Kostenis E. // Cell Chem. Biol. 2018. V. 25. P. 775–786.e5. https://doi.org/10.1016/j.chembiol.2018.03.012
  25. 25. Simon K., Merten N., Schröder R., Hennen S., Preis P., Schmitt N., Peters L., Schrage R., Vermeiren C., Gillard M., Mohr K., Gomeza J., Kostenis E. // Mol. Pharmacol. 2017. V. 91. P. 518–532. https://doi.org/10.1124/mol.116.107904
  26. 26. Harrington A.W., Liu C., Phillips N., Nepomuceno D., Kuei C., Chang J., Chen W., Sutton S.W., O’Malley D., Pham L., Yao X., Sun S., Bonaventure P. // Br. J. Pharmacol. 2023. V. 180. P. 401–421. https://doi.org/10.1111/bph.15969
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека